Podcast sobre Microscopía: Fundamentos y Técnicas Avanzadas

Kapitoly

El estándar de oro: Iluminación Köhler

Los dos diafragmas clave

El Día a Día en el Laboratorio

El Corazón del Microscopio

La Clave: Resolución y Apertura

El Equipo de Apoyo

Húmedo vs. Fijo

La Precisión es Poder

La Magia de la Fluorescencia

El Portero de la Luz

La vida útil de un fluorocromo

Diagnóstico a la velocidad de la luz

De la Luz a los Electrones

Dos Vistas del Micromundo

Fijación y Deshidratación

Inclusión y Recubrimiento

Tocar para ver

Dos formas de sentir

La Captura de la Imagen Perfecta

Errores Comunes y Procesamiento

Organizando el archivo digital

La seguridad es lo primero

Cumpliendo con la ley

El Arte Digital de la Célula

La Magia del Histograma

Resumen y Despedida

Přepis

Lucía: ¿Cuál es el error que comete el 80% de los estudiantes al usar un microscopio y que arruina por completo sus imágenes?

Alejandro: Buenísimo. Es no saber ajustar la luz. Creen que más luz es mejor, ¡y es un desastre!

Lucía: Al final de este segmento, sabrás exactamente cómo evitarlo para siempre. Estás escuchando Studyfi Podcast.

Alejandro: Exacto. El secreto para una imagen nítida, sin sombras ni reflejos raros, se llama iluminación Köhler. Es el estándar de oro.

Lucía: Suena súper técnico, Alejandro.

Alejandro: Pero no lo es, de verdad. Piensa en ello como ajustar los focos en un escenario. Quieres que la luz ilumine solo al actor —en este caso, tu muestra— y nada más.

Lucía: Entendido. ¿Y cómo logramos esa iluminación de estrella de cine para nuestras células?

Alejandro: Con dos controles clave: los diafragmas.

Lucía: Ok, aquí es donde muchos nos perdemos. Diafragma de campo y diafragma de apertura. ¿Cuál es cuál?

Alejandro: ¡Fácil! El diafragma de campo controla *cuánta área* de la muestra iluminas. Lo ajustas para que el círculo de luz cubra justo lo que ves por el ocular. Ni más, ni menos.

Lucía: Ah, para evitar luz parásita que reduce el contraste. ¡Tiene sentido!

Alejandro: ¡Exacto! Y luego está el diafragma de apertura. Este es el más delicado. Controla el ángulo de la luz que llega a la muestra. Aquí buscas el balance perfecto.

Lucía: ¿Balance entre qué?

Alejandro: Entre resolución y contraste. Generalmente, lo ideal es abrirlo a un 70-80% de la apertura del objetivo que usas. Es el punto dulce.

Lucía: ¡Ahí está el truco! Así que no se trata de abrir o cerrar a tope, sino de encontrar ese punto intermedio. ¡Genial!

Alejandro: Exacto. Y ese punto dulce es la clave en el día a día del laboratorio. Piensa en esto: llegas por la mañana y tienes varias muestras esperándote. Un frotis de sangre, una muestra de orina, quizás un esputo...

Lucía: Suena a una mañana movidita. ¿Y cada una necesita algo diferente?

Alejandro: Totalmente. Cada una es un mundo. Por eso, antes de tocar una sola muestra, lo primero es revisar tu equipo. ¿Están las lentes limpias? ¿Está bien calibrado? ¿La iluminación es la correcta? Es como un piloto revisando su avión antes de despegar.

Lucía: Entiendo. ¿Pero qué pasa si, a pesar de todo, algo sale mal? El texto habla de encontrar un “artefacto” que dificulta la observación.

Alejandro: ¡Gran pregunta! Pasa todo el tiempo. Un artefacto es básicamente cualquier cosa en la imagen que no debería estar ahí. Puede ser polvo, un cristal de tinción, una burbuja de aire... Si eso pasa, no puedes confiar en el resultado.

Lucía: Entonces... ¿toca empezar de cero?

Alejandro: A veces sí. O quizás solo repetir la tinción con más cuidado. El punto es que tu decisión ahí mismo —ajustar la técnica, repetir la preparación— influye directamente en el diagnóstico que hará el médico. No es poca cosa.

Lucía: Vaya, es mucha responsabilidad. Cada decisión cuenta.

Alejandro: Así es. Y por eso es fundamental documentarlo todo. Hoy en día usamos sistemas digitales para capturar las imágenes. Eso ayuda a comunicar los hallazgos y a mantener un control de calidad brutal.

Lucía: De acuerdo, la preparación es crucial. Ahora, hablemos de los componentes del microscopio. ¿Qué partes son las que tenemos que conocer sí o sí para no fallar?

Alejandro: ¡Claro que sí, Lucía! Pensemos en el sistema óptico como el corazón del microscopio. Aquí es donde ocurre la magia real. Son tres los componentes clave que deben trabajar en perfecta armonía.

Lucía: De acuerdo, tres componentes. ¿Cuáles son esos "tres mosqueteros" de la óptica?

Alejandro: ¡Me gusta esa analogía! Son el objetivo, los oculares y el condensador. Y si tuviéramos que nombrar un líder, sin duda sería el objetivo. Es el componente más crítico de todos.

Lucía: ¿Por qué es tan importante el objetivo?

Alejandro: Porque define dos cosas fundamentales: el aumento principal y, sobre todo, la resolución máxima. La resolución es la capacidad de distinguir dos puntos muy juntos como si estuvieran separados. Ese es el verdadero poder del microscopio.

Lucía: Entiendo. Entonces no se trata solo de ver las cosas más grandes, sino de verlas con más detalle.

Alejandro: ¡Exacto! Y para lograrlo, el objetivo tiene una característica clave llamada "apertura numérica". Piensa en ella como la capacidad que tiene el objetivo para captar la luz de la muestra. A mayor apertura, mayor resolución.

Lucía: Y supongo que por eso algunos objetivos de gran aumento necesitan aceite de inmersión, ¿verdad?

Alejandro: ¡Bingo! El aceite evita que la luz se desvíe al pasar de la muestra al objetivo. Nos permite maximizar esa apertura numérica y alcanzar resoluciones brutales, de hasta 200 nanómetros.

Lucía: ¡Wow! ¿Y los oculares y el condensador? ¿Son como los actores de reparto?

Alejandro: Se podría decir que sí, pero son imprescindibles. Los oculares nos dan el aumento secundario y adaptan la imagen para que nuestro ojo la vea bien. Pero recuerda: más aumento no siempre es mejor si la resolución original es mala.

Lucía: Claro, sería como hacerle zoom a una foto borrosa. Solo ves un borrón más grande.

Alejandro: Justo eso. Y el condensador es el director de iluminación. Se asegura de que la luz llegue a la muestra de forma óptima para que el objetivo pueda brillar. Es un trabajo en equipo.

Lucía: Genial, ahora entiendo cómo funciona este equipo. El objetivo es la estrella, pero necesita el apoyo de los oculares y el condensador. Ahora, hablemos de cómo usar todo esto en la práctica.

Alejandro: Claro. El primer paso, y el más crucial, es preparar bien la muestra. Una mala preparación arruina la observación incluso antes de empezar.

Lucía: Me imagino. Es como intentar leer un libro con las páginas pegadas. ¿Por dónde empezamos?

Alejandro: Empezamos decidiendo el tipo de montaje. Básicamente hay dos grandes familias: los montajes húmedos y los montajes fijos.

Lucía: De acuerdo, húmedo y fijo. Supongo que la diferencia es... ¿si la muestra se puede ir nadando o no?

Alejandro: ¡Has dado en el clavo! Un montaje húmedo es para observar muestras en su estado natural, vivitas y coleando. Es fundamental para ver microorganismos en movimiento o células sanguíneas frescas.

Lucía: O sea, para espiar la vida secreta de las células. ¿Y qué usamos para que no se "estresen"?

Alejandro: Buena pregunta. Usamos un medio como la solución salina fisiológica. Mantiene el equilibrio para que las células no se hinchen ni se encojan. Así vemos su comportamiento real.

Lucía: Entendido. ¿Y cuándo optamos por el montaje fijo? ¿Cuándo queremos que posen para la foto?

Alejandro: Exacto. El montaje fijo se usa cuando necesitas preservar la muestra para siempre o usar tinciones especiales que requieren pasos más agresivos. El proceso de fijación, con calor o químicos, las "congela" en el tiempo.

Lucía: Así podemos estudiarlas a fondo. Entiendo por qué es un paso crítico. Una mala elección y podrías matar lo que quieres ver vivo, o no poder teñir lo que necesitas analizar.

Alejandro: Justo eso. Y la técnica importa muchísimo. Por ejemplo, al poner el cubreobjetos, tienes que hacerlo con cuidado para evitar burbujas de aire. Una burbuja puede distorsionar la imagen por completo.

Lucía: ¡El archienemigo del microscopista! La burbuja de aire. Lo tendré en cuenta. Así que, con la muestra bien preparada, ya estamos listos.

Alejandro: Casi. Porque no todos los microscopios son iguales. Dependiendo de lo que busques, necesitarás un equipo u otro para sacarle el máximo partido a esa muestra perfecta.

Lucía: Genial, pues hablemos de eso. He oído que hay microscopios monoculares, binoculares... ¿cuál es la diferencia y cuándo usamos cada uno?

Alejandro: Exacto. La elección entre monocular y binocular depende mucho de la comodidad y el tiempo de uso. Pero si de verdad queremos llevar la observación al siguiente nivel, necesitamos una técnica más potente: la microscopía de fluorescencia.

Lucía: ¿Fluorescencia? Suena a fiesta de luces. ¿De qué va eso?

Alejandro: ¡Casi! Imagina que puedes hacer que partes específicas de una célula brillen en la oscuridad. Usamos unas moléculas llamadas fluorocromos, que son como diminutos rotuladores fluorescentes a nivel celular.

Lucía: ¡Qué pasada! ¿Y cómo lo hacemos? ¿Apuntamos una linterna y ya?

Alejandro: Ojalá fuera tan fácil. Necesitamos un sistema de filtros muy preciso. Aquí está la clave: este sistema tiene tres partes que trabajan en equipo para aislar la señal que nos interesa.

Lucía: Vale, un equipo de tres. ¿Quiénes son los jugadores?

Alejandro: Primero, el filtro excitador. Este solo deja pasar la luz del color exacto que "activa" nuestro fluorocromo. Luego, el espejo dicroico, que es el elemento central. Refleja esa luz de excitación hacia la muestra pero, y aquí está la magia, deja pasar la luz de otro color que emite la célula de vuelta.

Lucía: Entiendo. Uno elige la luz de entrada y el otro dirige el tráfico... ¿Y el tercero?

Alejandro: El tercero es el filtro barrera. Es como el guardia de seguridad final. Bloquea cualquier resto de la luz original y se asegura de que solo veamos la fluorescencia pura. Sin él, la imagen tendría mucho ruido.

Lucía: Así que el secreto es separar perfectamente la luz que enviamos de la que recibimos.

Alejandro: ¡Exacto! Y el gran reto es evitar el *bleed-through* o filtrado cruzado. Ocurre cuando la señal de un fluorocromo se cuela en el canal de otro, creando falsos positivos. Es el típico error que hay que controlar muy bien.

Lucía: ¡El caos! Entendido. Un sistema de filtros a prueba de todo. Pero me surge una duda, ¿estos "rotuladores" fluorescentes brillan para siempre o se les acaba la tinta?

Alejandro: ¡Gran pregunta! Y la respuesta es sí, se les acaba la "tinta". El fenómeno se llama fotoblanqueo. La misma luz que los hace brillar, con el tiempo, también los degrada y dejan de emitir fluorescencia.

Lucía: ¡Vaya! O sea que son un poco divas... brillan intensamente pero por poco tiempo.

Alejandro: Exacto, hay que sacarles la foto rápido. Pero esa capacidad de iluminar cosas específicas es precisamente lo que ha revolucionado el laboratorio clínico.

Lucía: ¿A eso te refieres con las aplicaciones clínicas? ¿Cómo se usa esto para diagnosticar enfermedades?

Alejandro: Piénsalo así. En microbiología, si sospechamos que un paciente tiene una infección bacteriana concreta, podemos usar anticuerpos marcados con un fluorocromo que solo se pegue a esa bacteria.

Lucía: Como ponerle un localizador GPS brillante a un solo tipo de bacteria entre millones... ¡Qué pasada!

Alejandro: ¡Justo! Miras por el microscopio y si ves puntitos brillantes, ¡bingo! Tienes un diagnóstico súper rápido y específico. Es increíblemente útil.

Lucía: ¿Y funciona con otras cosas además de bacterias? ¿Quizás para esas enfermedades autoinmunes que mencionaste?

Alejandro: Absolutamente. En las enfermedades autoinmunes, el cuerpo crea "autoanticuerpos" que atacan a nuestras propias células. Con la inmunofluorescencia, podemos hacer que esos anticuerpos traidores brillen.

Lucía: Ver para creer, literalmente. Así puedes confirmar si el sistema inmune se está volviendo loco. Impresionante. Esto nos da una visión súper directa de lo que ocurre en el cuerpo. Pero, ¿siempre es tan visual o hay formas de medir esta luz?

Alejandro: ¡Excelente pregunta, Lucía! Claro que podemos medir la luz, pero... ¿y si te digo que para ver las cosas más, más pequeñas, ni siquiera usamos luz?

Lucía: ¿Cómo? ¿Magia? ¿Qué usas si no es luz?

Alejandro: Casi. Usamos electrones. Aquí es donde entra la microscopía electrónica. Es un salto de gigante. Piensa que si el microscopio óptico es una lupa potentísima, el electrónico es como tener visión a nivel atómico.

Lucía: Wow, vale. Suena a ciencia ficción. ¿Y cómo funciona eso? ¿Disparas electrones a las muestras?

Alejandro: ¡Exacto! Aceleramos un haz de electrones que tiene una longitud de onda mucho más corta que la luz. Esto nos da una resolución increíble, hasta de 0.05 nanómetros. Podemos ver la ultraestructura de una célula, ¡incluso virus individuales!

Lucía: Alucinante. O sea, con esto no se te escapa nada. Y he oído que hay dos tipos principales, ¿verdad? Algo como TEM y SEM.

Alejandro: Así es. Son como dos formas distintas de "ver" con electrones. El Microscopio Electrónico de Transmisión, o TEM, lanza los electrones *a través* de una muestra súper fina. Es como una radiografía molecular para ver el interior.

Lucía: Entiendo, ves lo de dentro. ¿Y el otro, el SEM?

Alejandro: El SEM, o Microscopio Electrónico de Barrido, es diferente. Barre la *superficie* de la muestra con los electrones. No ves a través, sino que creas una imagen 3D súper detallada de su exterior, de su topografía.

Lucía: ¡Qué bueno! O sea, TEM para los planos internos y SEM para el modelo 3D del exterior. ¡Ahora lo entiendo! Pero preparar una muestra para que sea "súper fina" para un TEM... eso suena complicado.

Alejandro: Lo es, y es un paso absolutamente crítico. De hecho, la preparación de la muestra lo es todo en esta técnica.

Lucía: "Lo es todo"... vale, eso suena a que hay mucho en juego. ¿Cómo se prepara una muestra para que no se destruya bajo un haz de electrones?

Alejandro: Buena pregunta. ¡No quieres freír tu muestra! El primer paso es la fijación. Usamos glutaraldehído para "congelar" las proteínas en su sitio. Es como un andamio químico que mantiene todo en su lugar.

Lucía: ¿Un andamio? Me gusta esa analogía. ¿Y luego?

Alejandro: Luego, para TEM, hacemos una post-fijación con tetróxido de osmio. Esto estabiliza las grasas, las membranas... y además añade contraste. Como es un metal pesado, las zonas donde se pega se verán más oscuras.

Lucía: Entiendo. Primero el andamio general y luego refuerzas las paredes. ¿Qué sigue?

Alejandro: Toca quitar toda el agua. Hacemos una deshidratación con concentraciones crecientes de alcohol. Es un proceso gradual para no dañar la estructura por cambios osmóticos.

Lucía: Vaya, le das a la muestra un tratamiento de spa con un final un poco fuerte.

Alejandro: Algo así. Una vez seca, la muestra es extremadamente frágil.

Lucía: ¿Y cómo solucionamos esa fragilidad?

Alejandro: Para TEM, la infiltramos con una resina epóxica líquida que luego se endurece. Piensa en meter una fresa en gelatina. El bloque duro ya sí podemos cortarlo en láminas súper finas.

Lucía: ¡Claro! ¿Y para SEM es lo mismo?

Alejandro: No, aquí la cosa cambia. Como queremos ver la superficie, no la cortamos. Hacemos un secado especial llamado "de punto crítico" para que no se arrugue. Y después... la cubrimos con una capa finísima de oro.

Lucía: Espera, ¿le das un baño de oro a la muestra? ¡Qué glamuroso!

Alejandro: ¡Totalmente! Es para que sea conductora y los electrones no se acumulen en la superficie. Cada uno de estos pasos es crítico. Un error aquí... y la imagen final será un desastre.

Lucía: Uf, qué nivel de precisión. Entonces, una vez que la muestra está lista, perfecta y brillante... ¿qué pasa cuando el haz de electrones finalmente la golpea?

Alejandro: ¡Buena pregunta! Cuando el haz golpea, los electrones rebotan o se desprenden de la muestra, y eso es lo que usamos para formar la imagen. Pero... ¿y si te digo que hay una forma de "ver" sin mirar? Una forma de... tocar a nivel atómico.

Lucía: ¿Tocar? ¿Quieres decir que literalmente vamos a palpar la superficie de las moléculas? Suena a ciencia ficción.

Alejandro: ¡Totalmente! Se llama Microscopía de Sonda de Barrido. Piensa en ello como el braille, pero para átomos. En lugar de un haz de electrones, usamos una punta física ultrafina, una sonda, que recorre la superficie y detecta variaciones de fuerza o eléctricas.

Lucía: ¡Qué pasada! ¿Y cómo funciona exactamente esa sonda "palpadora"?

Alejandro: Hay dos técnicas principales. Primero, la Microscopía de Fuerza Atómica, o AFM. Es como la aguja de un tocadiscos, pero increíblemente más sensible. La punta está en un brazo flexible, un cantilever. Al moverse, las fuerzas de Van der Waals entre los átomos de la punta y la muestra doblan ese brazo. Un láser mide esa mínima desviación y así creamos un mapa 3D.

Lucía: Ok, entiendo. ¿Y el otro método?

Alejandro: Ese es el STM, o Microscopía de Efecto Túnel. Y aquí la cosa se pone un poco cuántica. Funciona solo con muestras conductoras. La sonda se acerca tanto, sin llegar a tocar, que los electrones hacen algo imposible en nuestro mundo: "saltan" a través del vacío.

Lucía: ¡Un salto cuántico! Ahora sí que estoy impresionada.

Alejandro: Es el efecto túnel. Medimos esa pequeñísima corriente para mapear la superficie. Ambas técnicas nos dan una resolución brutal, atómica. Y aquí es donde se pone realmente emocionante para la biomedicina...

Lucía: ¡Totalmente! Me imagino que tener esas imágenes a nivel atómico no sirve de nada si no puedes capturarlas y analizarlas bien.

Alejandro: ¡Exacto! Y aquí entramos en el mundo de la imagenología digital. No basta con ver, hay que registrar. Y hacerlo bien.

Lucía: ¿Y qué es "hacerlo bien"? ¿No es solo apuntar y disparar, como con el móvil?

Alejandro: Ojalá. Primero, la resolución del sensor debe coincidir con la del microscopio. Es el criterio de Nyquist. Piensa que si tus píxeles son demasiado grandes, te pierdes detalles. Si son demasiado pequeños, solo capturas ruido.

Lucía: Entendido. Como intentar dibujar un retrato con un rotulador demasiado gordo.

Alejandro: ¡Esa es la idea! Luego ajustas la exposición para no quemar la imagen ni dejarla oscura. Y tienes herramientas como el "binning", que agrupa píxeles para captar más luz en muestras tenues. Sacrificas resolución, pero ganas sensibilidad.

Lucía: ¿Y cuál es el error más típico que ves en el laboratorio?

Alejandro: No actualizar la corrección de campo plano. Es un paso que elimina artefactos como el polvo en la lente o la iluminación desigual. Si no lo haces, todas tus imágenes tendrán los mismos fallos.

Lucía: ¡Vaya! Es como tener una mancha en las gafas y pensar que todo el mundo tiene una marca en la cara.

Alejandro: Exacto. Una vez tienes la imagen "limpia", puedes usar filtros. Los de suavizado reducen el ruido, y los de realce de bordes ayudan a definir contornos celulares.

Lucía: Entonces, capturar la imagen es solo el principio. El procesamiento es donde realmente extraes la información clave.

Alejandro: Precisamente. Y esa información es la que nos lleva a los diagnósticos. Pero para eso, primero hay que preparar la muestra...

Lucía: De acuerdo. Una vez tenemos la imagen procesada... ¿qué hacemos con ella? No podemos simplemente guardarla en una carpeta llamada “Imágenes Chulas del Microscopio”.

Alejandro: Definitivamente no. Aquí entra la gestión sistemática. Lo primero es el sistema de nomenclatura. Debe ser estándar: Fecha + ID del paciente + Técnica. Así, cada archivo es único y fácil de encontrar.

Lucía: Suena lógico. ¿Y cómo organizamos las carpetas para no tener un caos?

Alejandro: Con una jerarquía clara. Piensa en una pirámide: Departamento, luego Tipo de Análisis, y finalmente el Período de tiempo. Así la navegación es súper intuitiva. Y, por supuesto, copias de seguridad. Siempre.

Lucía: La famosa regla del 3-2-1. Tres copias, dos medios distintos, una fuera del laboratorio.

Alejandro: Exacto. Almacenamiento local, en red y una copia externa. Además, verificamos la integridad de los archivos periódicamente con algo llamado checksums para detectar corrupción de datos a tiempo.

Lucía: Vale, tenemos todo bien guardado y organizado. Pero, ¿cómo compartimos estas imágenes de forma segura? Contienen información muy sensible del paciente.

Alejandro: Gran punto. La transferencia segura es crítica. Aquí la clave es el cifrado. Usamos algoritmos como AES-256 para los archivos y TLS para la comunicación. Piensa en ello como un sobre sellado que solo el destinatario puede abrir.

Lucía: Entiendo. ¿Y para controlar quién accede a esos “sobres”?

Alejandro: Para eso está la autenticación multifactor, o MFA. No basta con una contraseña. El sistema te pide algo que sabes, como la clave; algo que tienes, como un token; y a veces algo que eres, como tu huella.

Lucía: Ah, como cuando el banco me pide la clave y un código del móvil. ¡Tiene sentido!

Alejandro: Precisamente. Y para conexiones remotas, siempre a través de una VPN institucional, que crea un túnel seguro a la red del laboratorio. Todo esto es para cumplir con normativas como el RGPD, el Reglamento General de Protección de Datos.

Lucía: Que, en resumen, protege la privacidad del paciente a toda costa.

Alejandro: Exacto. Por eso también registramos todo. Cada acceso, cada modificación... queda documentado en un registro de auditoría. Si hay un problema de seguridad, podemos saber exactamente qué pasó, quién lo hizo y cuándo. Es nuestra red de seguridad digital.

Lucía: Esa red de seguridad es impresionante. Y hablando de lo digital, pasemos a nuestro último tema: ¿qué pasa después de tomar la foto? El procesamiento de imágenes.

Alejandro: ¡Exacto! Y aquí es clave entender algo. No estamos hablando de ponerle un filtro de Instagram a una célula. El procesamiento digital de imágenes es una herramienta de análisis súper potente.

Lucía: Claro, porque una cosa es que se vea bonito y otra que la información sea científicamente correcta, ¿no?

Alejandro: Precisamente. El objetivo es extraer información cuantitativa, medir cosas, mejorar la interpretación visual... pero siempre, siempre, preservando la integridad científica de la muestra.

Lucía: Okay, ¿y cómo se empieza? ¿Cuál es el primer paso para procesar una de estas imágenes sin, digamos, 'falsearla'?

Alejandro: Buena pregunta. La base de todo son los ajustes de histograma. Piensa en el histograma como un gráfico que te dice cuántos píxeles hay de cada tono, desde el negro más puro hasta el blanco más brillante.

Lucía: Ah, como los controles de brillo y contraste de una tele, pero a un nivel mucho más profesional.

Alejandro: ¡Justo eso! Al redistribuir esos valores, podemos optimizar la imagen para que las estructuras que nos interesan resalten. ¡Hacemos visible lo que apenas se intuía!

Lucía: Increíble. Desde preparar la muestra hasta analizarla digitalmente... ha sido un viaje alucinante. La clave, entonces, es la precisión y el cuidado en cada paso del camino.

Alejandro: Ese es el resumen perfecto, Lucía. La atención al detalle lo es todo en este campo. Ha sido un verdadero placer estar aquí.

Lucía: El placer ha sido nuestro, Alejandro. Y a todos nuestros oyentes, gracias por acompañarnos en este viaje microscópico. ¡Hasta la próxima en Studyfi Podcast!